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單增李斯特菌、副溶血弧菌和沙門氏菌液相芯片檢測方法的建立

發(fā)布時間:2018-06-24 來源: 人生感悟 點擊:

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  摘 要:目的是建立一種快速檢測單增李斯特菌、副溶血弧菌和沙門氏菌的液相芯片檢測方法。采用基于間接競爭法的原理,將3種細菌抗原分別與不同的聚苯乙烯微球偶聯(lián),以藻紅蛋白(PE)熒光標記二抗為信號,優(yōu)化反應條件,對建立的方法進行靈敏度、特異性和可重復性驗證。結果顯示,3種細菌檢測抗體最佳加入量分別為10ng、10ng、5ng,建立的方法檢測單增李斯特菌、副溶血弧菌和沙門氏菌的最低檢測限均可達到103 CFU/mL,檢測其他常見食源性致病菌無交叉反應。結論表明,建立了一種快速檢測食品中金黃色葡萄球菌的液相芯片檢測方法,能夠應用于實際樣品的檢測。
  關鍵詞:單增李斯特菌 副溶血弧菌 沙門氏菌 液相芯片 檢測
  前言
  近年來,食源性疾病已成為世界上最突出、最廣泛的食品安全問題,病原微生物引起的食源性疾病則是影響食品安全的最主要因素之一[ 1 ]。微生物性食物中毒事件主要由食物污染或變質、生熟交叉污染等原因引起,且氣溫較高、氣候潮濕的環(huán)境適于細菌生長繁殖,導致食物易于腐敗變質,一旦儲存、加工不當,極易發(fā)生由沙門氏菌、副溶血性弧菌等微生物引起的食物中毒。現行檢測手段已無法滿足日常對食源性致病菌檢測的需要,目前檢驗檢疫工作中常用于檢測和鑒定食源性致病菌的方法主要有PCR、Southem Blot雜交、酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)等一些簡單的分子生物學和免疫學方法[ 2 ],F行的檢測方法一般以檢測致病菌為主,需要增菌培養(yǎng),檢測時間長,無法滿足高通量的檢測要求,遠不能滿足食品檢測的需要,市場迫切需要能同時檢測食源性致病菌的靈敏度更高、特異性更強、簡便快捷的高通量技術和方法[ 3 ]。因此,目前迫切需要發(fā)展一種快速、準確的方法來檢測和追蹤病原體和污染物的來源[4]。
  液相芯片技術是在流式細胞技術、酶聯(lián)免疫吸附技術和傳統(tǒng)芯片技術基礎上開發(fā)的新一代生物芯片技術和新型蛋白質研究平臺,能同時檢測多種致病菌。邱楊等[ 5 ]通過該法建立了對沙門氏菌、單增李斯特菌、金黃色葡萄球菌、霍亂弧菌、副溶血弧菌的快速液相芯片檢測方法,檢測靈敏度達到50~100copies/mL。郭啟新等[ 6 ]建立了對金黃色葡萄球菌、單核增生李斯特氏菌、志賀氏菌的檢測方法,具有很好的特異性,檢測靈敏度分別達38、44、21CFU/mL。Sun等[ 7 ]利用該法建立了高通量的同時檢測6種食源性致病菌的方法,檢測靈敏度達到20.4×103CFU/mL,遠高于PCR。
  但基于多重PCR的液相芯片技術對單管樣本進行大量不同指標的高通量多重PCR方法建立仍存在困難,至今鮮見液相芯片用于檢測多種致病菌方法建立的相關報道。將液相芯片技術應用到食源性致病菌檢測中,可在短時間內實現對多個樣品同時進行多種致病菌靈敏、準確的檢測,因而有望大大提高食源性致病菌的檢測效率,在有效控制食物中毒事件的發(fā)生、食品安全控制、海關進出口檢驗檢疫、臨床診斷等方面具有廣闊的應用前景。
  1 材料與方法
  1.1 材料
  Luminex 200液相懸浮芯片系統(tǒng)(美國Luminex公司);4625型孔板振蕩器;ST16R冷凍離心機(美國Thermo公司);編號No.18、No.29、No.52的微球(美國Luminex公司);罨彌_液:0.1mol/L NaH2P04- N a2 HP04,pH6.2;磷酸鹽緩沖液(PBS):138mmol/L NaCI,2.7mmol/L KCl,8mmol/ L Na2HP04,1.5mmol/L KH2P04,pH7.4;洗滌緩沖液:PBS,0.05%Tween-20,pH7.4;分析緩沖液:PBS,1%BSA,pH7.4;封閉緩沖液:50mmol/L Tris,153mmol/L NaCl,2%BSA,0.05%Tween-20,pH7.4;儲存緩沖液:PBS,0.1%BSA,0.02%Tween-20,0.05%疊氮化鈉,pH7.4。菌種為本實驗室保藏與西北農林科技大學食品實驗室饋贈。
  1.2 方法
  1.2.1 微球偶聯(lián)抗原
 、偃∥⑶50μL(1.25×106個/mL)置于EP管,14000g離心4min,棄上清液。
 、诩尤40μL活化緩沖液重懸微球,漩渦混合30s。
 、奂尤50mg/mL NHS和EDC各5μL,混勻,避光室溫下旋轉混合600rpm,20min。
 、芗尤150μL PBS,漩渦混合10s,14000g離心4min,棄上清液。
  ⑤用PBS洗滌3次后,加入150μL PBS重懸,再加入抗原,用PBS補齊至500μL,避光室溫旋轉混合600rpm,2h。
  ⑥14000g離心4min,棄上清液。
 、呒尤150μL封閉緩沖液,漩渦混合15s,避光室溫旋轉混合600rpm,30min。
 、16000g離心4min,棄上清液,加入100μL儲存緩沖液4℃保存偶聯(lián)的微球?乖尤肓繛50ng。1.2.2 檢測
  ①取出偶聯(lián)微球,恢復至室溫后漩渦30s。
 、96孔板中加入100μL PBS預濕實驗孔,抽去孔內液體,每孔中加入適量預混好的偶聯(lián)微球(約2000個),用150μL PBS洗滌兩次。
  ③將適量標準品或樣品分別加入合適的孔中,空白孔加入等量PBS,再加入適量的抗體,用PBS補齊各孔至100μL。
 、苡靡埔浩鞣磸统槲靹蚩變热芤,避光條件下37℃,600rpm振蕩60min。
  ⑤反應完畢后,抽去孔內液體,用150μL PBS洗滌兩次。
 、廾靠字屑尤100μL經適當稀釋的PE標記二抗,移液器反復抽吸混勻。
 、弑芄鈼l件下,37℃,600rpm振蕩45min后,抽去孔內液體,用150μL PBS洗滌兩次。

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