烤煙存儲期間煙葉酶活性變化的初步研究
發(fā)布時(shí)間:2019-08-26 來源: 人生感悟 點(diǎn)擊:
摘要 [目的]探究初烤煙存儲過程中煙葉相關(guān)酶活性變化。[方法]以烤煙品種 NC89 為材料,研究皖南地區(qū)煙葉存儲過程中多酚氧化酶(PPO)、過氧化物酶(POD)、脂氧合酶(LOX)、苯丙氨酸裂解酶(PAL)活性隨存儲時(shí)間延長的變化趨勢。[結(jié)果]隨著存儲時(shí)間變長,幾種酶活性均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。其中多酚氧化酶、脂氧合酶和苯丙氨酸裂解酶活性在存儲180 d時(shí)分別達(dá)到最大值[50.50 U/g,34.20、0.54△OD/(g·min)],而過氧化物酶活性則在存儲270 d時(shí)達(dá)到最大值(118.90 U/g)。[結(jié)論]該研究為進(jìn)一步豐富煙葉陳化理論,探究烤煙存儲質(zhì)量提升形成機(jī)理提供了參考。
關(guān)鍵詞 烤煙;存儲;酶活性
中圖分類號 TS41+1文獻(xiàn)標(biāo)識碼 A文章編號 0517-6611(2018)15-0001-02
Abstract [Objective]To explore the activity changes of related enzymes in flue-cured tobacco leaves during storage. [Method]We studied the activity change trends of polyphenol oxidase (PPO), peroxidase (POD), lipoxygenase (LOX) and phenylalanine lyase (PAL) in tobacco leases with the extension of storage time based on NC89 flue-cured tobacco as experimental material in south Anhui. [Result]As the storage time increased, the activity of four enzymes showed a tendency of increasing first and then decreasing. The maximum activity of polyphenol oxidase, lipoxygenase and phenylalanine were reached when the tobacco were stored 180 days. The maximum were 50.50 U/g, 34.20, 0.54 △OD/(g·min), respectively, while the peroxidase activity reached the maximum(118.90 U/g) when the tobacco were stored 270 days.[Conclusion]The study provides a reference for further eiching the theory of tobacco leaf aging and exploring the mechanism of improving the quality of flue-cured tobacco during storage.
Key words Flue-cured tobacco;Storage;Enzyme activity
煙葉陳化能夠改善煙葉的香味品質(zhì),是提高煙葉可用性的重要環(huán)節(jié)[1]。在煙葉存儲期間,煙葉內(nèi)各種化學(xué)變化借助自然氣候的變化加速進(jìn)行,從而改善煙葉品質(zhì)和理化性狀,這一過程被稱為自然陳化。酶類是陳化過程中提高煙葉發(fā)酵質(zhì)量的動力,是煙葉陳化的主要機(jī)理之一[2]?緹煷鎯^程中,在酶類的作用下烤煙煙葉中的多種物質(zhì)氧化分解形成重要的香氣成分,多酚氧化酶、過氧化物酶、脂氧合酶和苯丙氨酸裂解酶則是其中主要的酶類,對促進(jìn)煙葉陳化發(fā)酵、提高煙葉品質(zhì)具有積極作用。前人[3-6]對初烤煙存儲期間相關(guān)酶的活性變化進(jìn)行了大量的研究。為了進(jìn)一步豐富煙葉陳化理論、探究烤煙存儲質(zhì)量提升形成機(jī)理,筆者以皖南地區(qū)存儲烤煙為材料,研究了烤煙在陳化過程中多酚氧化酶、過氧化物酶、脂氧合酶、苯丙氨酸裂解酶活性的變化。
1 材料與方法
1.1 材料
以烤煙品種NC89初烤煙為材料,烘烤后于自然條件下儲存。每隔45 d取1次樣,煙葉去主脈,干燥、粉碎后備用。
1.2 方法
1.2.1 多酚氧化酶活性測定。參照朱廣廉等[7]的方法:取1 g樣品,加入預(yù)冷的0.05 mol/L磷酸緩沖液(pH 7.8)1 mL,研磨,再加1 mL緩沖液,傾入5 mL離心管,于4 ℃、10 000 r/min離心20 min,收集上清液。反應(yīng)體系為3 mL 0.2 mol/L鄰苯二酚(用pH 7.8磷酸緩沖液配制),1 mL酶液,以滅活酶液作為空白對照,于30 ℃下水浴10 min,立即用20%三氯乙酸中止反應(yīng)。5 000 r/min離心10 min后,取上清液于495 nm處測定其吸光值。
1.2.2 過氧化物酶活性測定。參照李玲等[8]的方法:取1 g樣品,加入0.1 mol/L磷酸緩沖液(pH 7.0),在冰浴中研磨,12 000 r/min離心20 min,收集上清液。4.7 mL反應(yīng)液包括2.7 mL 0.05 mol/L磷酸緩沖液(pH 5.5),1.0 mL 2%的H2O2,1.0 mL 0.05 mmol/L愈創(chuàng)木酚。向反應(yīng)液中加入0.3 mL 酶液(空白管為0.3 mL pH 7.0的磷酸緩沖液)混勻后,水浴 37 ℃反應(yīng)15 min,冷卻后測定其在470 nm處的吸光值。
1.2.3 脂氧合酶活性測定。參照宮長榮等[9]的方法:取0.5 g樣品,加入0.10 mol/L磷酸緩沖液(pH 7.0)在冰浴中研磨,12 000 r/min離心20 min,收集上清液。取0.3 mL酶液于試管中,加入2 mL底物乳狀液(2.24 mmol/L亞油酸分散于含0.5 μL/mL吐溫-20的0.1 mol/L、pH 9.0的硼酸緩沖液中),混勻后放入30 ℃水浴中并開始計(jì)時(shí),反應(yīng)3 min后加入5 mL無水乙醇終止反應(yīng),然后加入5 mL蒸餾水混勻并測定其在234 nm處的吸光值。
熱點(diǎn)文章閱讀